Die Kontrolle von Blattläusen als Schadinsekten – Von chemischem Pflanzenschutz bis pflanzlicher Resistenz

The control of aphids as insect pests – From chemical crop protection to plant resistance

Journal für Kulturpflanzen, 73 (7-8). S. 204–213, 2021, ISSN 1867-0911, DOI: 10.5073/JfK.2021.07-08.04, Verlag Eugen Ulmer KG, Stuttgart

Kontaktanschrift

Dr. Torsten Will, Julius Kühn-Institut (JKI) – Bundesforschungsinstitut für Kulturpflanzen, Institut für Resistenzforschung und Stresstoleranz, Erwin-Baur-Str. 27, 06484 Quedlinburg, E-Mail: torsten.will@julius-kuehn.de, ORCID: https://orcid.org/0000–0001–7985–4292

Zur Veröffentlichung eingereicht/angenommen

21. April 2021 / 28. Juni 2021

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Die genannten Punkte ermöglichen es Blattläusen, das Nahrungspotential ihrer Wirtspflanzen in kürzester Zeit auszunutzen und bei Überbevölkerung oder beginnender Seneszenz des Wirtes neue Pflanzen durch die Bildung geflügelter Weibchen auch über größere Entfernungen hinweg zu erschließen. Hierbei hängt es jedoch von der Blattlausart ab, welcher Faktor für die Bildung geflügelter Tiere eine größere Bedeutung hat (Braendle et al., 2006).

Ein weiterer Effekt, der die Bedeutung als Pflanzenschädling verstärkt, ist ihre Funktion als Vektor für Pflanzenviren. Bereits durch Probesaugstiche zur Wirtspflanzenerkennung können Blattläuse sehr schnell an den Mundwerkzeugen anhaftende Viren von infektiösen Pflanzen über kurze Distanzen auf gesunde Pflanzen übertragen (nichtpersistente Übertragung). Auf diese Weise werden ökonomisch bedeutende Viren, wie das Y-Virus der Kartoffel (PVY), das Salat-, Tabak- oder Gurken­mosaikvirus im Gemüseanbau oder das Scharka- oder das Himbeermosaikvirus im Obstanbau, übertragen (Ng & Perry, 2004). Daneben können Viren auch persistent übertragen werden, wobei sie nach Aufnahme durch die Blattlaus in deren Körper zirkulieren und die Blattlaus dadurch dauerhaft infektiös bleibt (Ng & Perry, 2004). Damit können diese Viren durch geflügelte Morphen über große Distanzen verbreitet und längere Zeit übertragen werden. Zu diesen Viren gehören beispielweise das Wasserrübenvergilbungsvirus (TuYV) im Raps und das Milde Vergilbungs­virus (BMYV) der Rübe (Schliephake et al., 2000), die Gerstengelbverzwergungsviren des Getreides (BYDV; Gray & Gildow, 2003) oder das Blattrollvirus der Kartoffel (PLRV; Van den Heuvel et al., 1991). Vielfach sind die von diesen Viren verursachten Pflanzenschäden ökonomisch wesentlich bedeutender als die eigentlichen Saugschäden der Blattläuse.

Die wirtschaftliche Schadschwelle, die heute als kritischer Schwellenwert für den Einsatz von Insektiziden dient und bereits 1959 von Stern et al. in ihren Grund­zügen definiert wurde, ist der Punkt, an dem die durch Schädlinge verursachten monetären Schäden die gleichen Kosten verursachen wie der Einsatz eines Insektizids. Nachdem Mitte der 1960er Jahre die schädlichen Wirkungen eines rein chemischen Pflanzenschutzes mit seinerzeit üblichen Wirkstoffen immer deutlicher wurden und Forderungen zu einem verantwortungsvolleren Umgang mit diesen aufkamen (Carson, 1962), wandte sich die Forschung eingehender dem Prinzip des Inte­grierten Pflanzenschutzes (IPM) zu (Kogan, 1998). Dieser basiert auf einer Kombination von Verfahren biologischer (z. B. Nütz­linge, Pathogene), biotechnischer (z. B. Verwirrmethode mittels Sexualpheromonen), pflanzenzüchterischer (Toleranz, Resistenz) sowie anbau- und kulturtechnischer Maßnahmen (z. B. Aussaatzeiten), mit dem Ziel, den Einsatz chemischer Pflanzenschutzmittel auf ein notwendiges Maß zu reduzieren.

Seit Beginn der 1980er Jahre wird dieses Leitbild in Deutschland und seit 2009 auf europäischer Ebene verfolgt. Dem gegenüber stehen jedoch wirtschaftliche Belange und technische Probleme. Denn trotz dieser Prio­risierung und dem klar formulierten Ziel der Re­duktion von Insektiziden und anderen Pflanzenschutz­mitteln, wurde für Insektizide (ohne inerte Gase) nur ein geringer Rückgang erreicht, während die pro Fläche eingesetzten Pestizidmengen seit Mitte der 1990er Jahre weitestgehend unverändert geblieben sind (BVL, 2019). Ursache ist u. a., dass Viren effektiv nur protektiv durch eine Reduzierung der Blattläuse als Virusvektoren zu bekämpfen sind. Nur in wenigen Fällen wurde eine wirksame natürliche Resistenz bzw. Toleranz gegenüber einzelnen Blattlausarten identifiziert und züchterisch genutzt. Hierbei spielen vermutlich ökonomische Aspekte eine Rolle, in deren Folge es nur dann zur wirtschaft­lichen Nutzung von Resistenzen kam, wenn weitere Maßnahmen der Kon­trolle von Blattläusen, z. B. durch den vergleichsweise kostengünstigen Einsatz von Insekti­ziden, nicht mehr effektiv nutzbar waren und Schäden durch diese Schad­insekten quantifiziert werden konnten.

Ein wichtiges Beispiel für die Nutzung pflanzlicher Resistenz finden wir bei Weinreben gegen die Reblaus Daktulosphaira vitifoliae (Powell, 2012). Diese ursprünglich aus Nordamerika stammende Art wurde im vorletzten Jahrhundert in Europa eingeschleppt und führte besonders in West- und Mitteleuropa durch Zerstörung der Rebflächen zu einer Krise in der Weinproduktion. Durch Pfropfung von Edelreisern der europäischen Rebsorten auf Reblaus-tolerante amerikanischer Vitis-Arten gelang es Mitte des 19. Jahrhunderts die Reblaus erfolgreich zu kontrollieren.

Getreideblattläuse wie z. B. Rhopalosiphum padi, Sitobion avenae und Metopolophium dirhodum bilden beispielsweise in Sachsen-Anhalt den größten Anteil an der durch Saugfallenfänge überwachten Blattlauspopulation (Karl, 1992). Die Bedeutung von R. padi und S. avenae liegt besonders in der Übertragung des Gerstengelb­verzwergungsvirus, dessen Verbreitung bisher fast ausschließlich durch eine chemische Bekämpfung (Vektorenbekämpfung) kontrolliert wird. In wenigen Fällen konnten jedoch Resistenzgene in Weizen gegen S. avenae identifiziert werden: dnY, Ra und Ra-1 auf Chromosom 7D und 6A (Fu et al., 2008; Hu, 2009; Liu et al., 2012) und Sa2 auf Chromosom 7DS (Luo et al., 2014). Das Resistenzgen dnY wurde auf Chromosom 7DS-4 lokalisiert und die ersten Marker für dieses Gen konnten entwickelt werden (Fu et al., 2008). Aus der Wildgerste Hordeum vulgare ssp. spontaneum konnte kürzlich ein QTL auf dem Chromosom 2H in H. vulgare eingekreuzt werden (Åhman & Bentsson, 2019), das eine Resistenz gegen R. padi vermittelt. Der Nachweises für D. noxia, dass Resistenz ein funktionaler Weg für die Kontrolle von Blattläusen bei Getreide darstellt, und der oben beschriebenen Identifizierung von Resistenzgenen für R. padi und S. avenae in Gerste bzw. Weizen, erlaubt zukünftig neben einem Fokus in der Getreidezüchtung auf Resistenz gegen Pflanzenviren, z. B. das Gerstengelbverzwergungsvirus (Jarošová et al., 2016), auch die Selektion von Material auf Vektorresistenz.

Neben Beispielen für bedeutende Kulturen wie Gerste, Weizen und Leguminosen (siehe unten) konnte eine Blattlausresistenz ebenfalls bei Himbeere umgesetzt werden. Hierbei wurden Sorten gezüchtet, auf denen sich die Große Himbeerlaus (Amphorophora rubi) aufgrund einer reduzierten Nahrungsaufnahme deutlich weniger vermehrt, so dass der Befallsdruck für die Verbreitung schädigender Viren abnimmt (Schliephake, 2010).

Pflanzenzüchtung muss in ihrem Fokus auf Pflanzengesundheit, u. a. vermittelt durch Resistenz, zwischen verschiedenen Merkmalen abwägen, wobei gerade bei Nahrungspflanzen Bekömmlichkeit und Geschmack im Vordergrund stehen. Am Beispiel der Blauen Lupine (Lupinus angustifolius) zeigt sich, dass die züchterische Reduzierung des Bitteralkaloidgehaltes eine wichtige Voraussetzung ist, um ihre Samen als Eiweißquelle für die tierische und menschliche Ernährung zu nutzen. Als Konsequenz der Reduzierung des Bitteralkaloidgehaltes wird aber gleichzeitig die natürliche Abwehr gegenüber Blattläusen gesenkt (Thieme et al., 2014). Bei Aphis fabae, Acyrthosiphon pisum, Myzus persicae und A. craccivora wurde eine negative Korrelation zwischen der Blatt­lausvermehrung und dem Gesamtgehalt an Alkaloiden (Quinolizidine alkaloids – QA) festgestellt. Einige Lupinengenotypen konnten jedoch identifiziert werden, die einen geringen QA-Gesamtgehalt bei zugleich keiner oder deutlich reduzierter Blattlausvermehrung aufweisen. Es ließ sich nachweisen, dass die Blattlausvermehrung nicht nur durch den Gesamtgehalt, sondern auch durch die Zusammensetzung der QAs beeinflusst wird. (Philippi et al., 2015a; Philippi et al., 2015b).

Diese Form der pflanzlichen Resistenz, denen sich die oben genannten Beispiele zuordnen lassen, beruht auf einer vollständigen oder teilweisen Inkompatibilität von Wirtspflanze und Blattlaus und zeigt sich u. a. bei Beobachtung des Saugverhaltens einer Blattlaus in Form einer stark verringerten Nahrungsaufnahme (Garzo et al., 2017). Auch wenn es bereits in einigen Fällen gelungen ist, QTLs bzw. einzelne Gene für pflanzliche Resistenz zu identifizieren, so ist deren Funktion innerhalb der Blattlaus-Pflanze-Interaktion meist unbekannt. Es kann jedoch vermutet werden, dass die Mechanismen, die den verschiedenen Resistenzen zugrunde liegen, vielfältig sind. Beispiele sind hierfür das VAT-Gen-Cluster aus Cucumis melo, welches u. a. einen intrazellulären Nucleotide-Binding Leucine-Rich Repeat (NBS-LRR) Rezeptor kodiert und Resistenz gegen A. gossypii vermittelt (Boissot et al., 2016), sowie SLI1, das ein Chaperon innerhalb der Sieb­elemente der Modellpflanze Arabidopsis thaliana kodiert und Pflanzen resistent gegen M. persicae macht (Kloth et al., 2017).

Die Entwicklung eines breiten Spektrums an toleranten und resistenten Sorten unterschiedlichster Kultur­arten ist umso drängender, da Resistenzen gegen verschiedene Insektizide seit einigen Jahren in Deutschland und anderen europäischen Ländern (Nauen & Elbert, 2003) sowie weltweit (Edwards et al., 2008) zunehmen. Untersuchungen an der Blattlausart M. persicae in Frankreich deuten darauf hin, dass gerade die Ausweitung von Monokulturen und die Intensivierung von Insektizid­anwendungen zur Selektion von insektizidresistenten Blattlausbiotypen führen (Zamoum et al., 2005). Eine vergleichbare Selektion von einzelnen Biotypen wird auch für die Blattlausart S. avenae in Großbritannien beschrieben (Llewellyn et al., 2004). Eine Kombination (Pyramidisierung) von QTLs bzw. Resistenzgenen, welche mehrere unabhängige Resistenzmechanismen mit­einschließt, erscheint hinsichtlich der Vermeidung bzw. der Verlangsamung einer Anpassung sich dynamisch verändernder Blattlauspopulationen an resistente Sorten zielführend (Mundt, 2018). An der Leguminosen-Modellpflanze Medicago truncatula zeigte die Pyramidisierung zweier Resistenzgene zudem einen additiven Effekt hinsichtlich Resistenz, wobei u. a. Blattlauskolonien kleiner ausfielen als auf Pflanzen mit den jeweiligen Einzelgenen (Kamphuis et al., 2019). Bezogen auf den direkten Schaden an Sojabohne durch Befall mit A. glycines konnte eine Kombination von mehr als zwei Resistenzgenen jedoch keinen zusätzlichen Effekt erzielen (Zhang et al., 2018).

Die Verschiebung des stagnierenden Wirkstoffmarktes hin zu den Saatgutsparten (Sortenentwicklung) der führenden Agrarkonzerne wird auch durch Insektizidresistenzen beschleunigt und die langfristigen Forschungs­anstrengungen in Industrie und Ressortforschung werden konsequent dahingehend ausgebaut. Im Jahr 2013 beschloss die Europäische Union (EU) das Verbot dreier Insektizide aus der Gruppe der Neonicotinoide zur Saatgutbeizung (Clothianidin, Imidacloprid und Thiamethoxam), die zum Schutz von Sämlingen/Jungpflanzen vor frühem Befall durch Schadinsekten, wie z. B. Blattläusen als Virusvektoren in Mais und anderen Getreidesorten, eingesetzt wurden. Ausnahmen waren zwischen 2013 und 2018 möglich und für Weizen und Gerste die Saatgut- und Bodenbehandlungen erlaubt (Durchführungsverordnung (EU) Nr. 485/2013). Darüber hinaus beschloss die EU, die Zulassung von Thiacloprid, einem häufig verwendeten Insektizid derselben Gruppe, ab Anfang 2021 nicht mehr zu verlängern. Grundlage hierfür war die Einschätzung eines hohen Risikos durch die Exposition gegenüber Stäuben, aber auch durch eine Blattbehandlung mit anschließender systemischer Translokation in der Pflanze (Durchführungsverordnung (EU) Nr. 485/2013). In weiterführenden Untersuchungen konnte diesbezüglich gezeigt werden, dass das Risiko für die Bildung Neonicotinoid-haltiger Stäube abhängig vom Saatgut, d. h. der Kulturplanze, und verschiedenen technischen Faktoren sowie Umweltfaktoren ist (Wood & Goulson, 2017). Diskussionen über ein Verbot von Neonicotinoiden gibt es ebenfalls in den USA, wo die US-Umweltschutz­behörde jedoch eine im Vergleich zur EU gegenteilige Entscheidung getroffen hat. Die voneinander abweichenden Entscheidungen beruhen auf unterschiedlichen Rechtsprinzipien. Das Vorsorgeprinzip, welches in der Bundesrepublik Deutschland und der EU im Rahmen der Umwelt­politik die Grundlage bildet, hat das Ziel Schäden durch das Erkennen von Risiken im Voraus zu verhindern. Dem gegenüber steht das Nachsorgeprinzip oder auch Wissenschaftsprinzip, das in den USA verfolgt wird und zweifelsfreie wissenschaftliche Belege für z. B. eingetretene Umweltschäden als Grundlage für Regulierungen einfordert.

Vor dem genannten Hintergrund scheint es sinnvoll, ein dauerhaftes und systematisches Monitoring, wie es in Großbritannien seit ca. 50 Jahren im Rahmen des Rothamsted Insect Survey stattfindet, zu etablieren. Hierdurch können langfristige Veränderungen im Auf­treten und der Verteilung einzelner Arten und deren Bio­typen (Llewellyn et al., 2003; Bell et al., 2015), sowie Informationen über den genetischen Hintergrund einer Population gewonnen werden. Genetische Analysen mittels Genotyping by Sequencing zeigen, dass sich die Art R. padi innerhalb Englands in eine nördliche und eine südliche Subpopulation aufspaltet, wobei u. a. ein Zusammenhang der genetischen Varianz der Subpopula­tionen und der Übertragung von BYDV vermutet wird (Morales-Hojas et al., 2019). Untersuchungen ergaben bereits, dass die Effektivität der Übertragung nicht-persistenter Viren, wie z. B. des Gurkenmosaikvirus (Simons, 1959; Bosquée et al., 2016) aber auch persistenter Viren wie BYDV (Gray et al., 2007; Kern et al., 2021), vom Genotyp und somit vom genetischen Hintergrund des entsprechenden Blattlausklons abhängt. Durch vergleichende Genanalyse von Klonen mit unterschiedlicher Virulenz könnten die genetischen Grundlagen der Virusübertragung weiter aufgeklärt, Marker für die Übertragungseffizienz bei Blattläusen entwickelt und für ein Monitoring verwendet werden. Neben diesen Aspekten wäre es durch die Nutzung diagnostischer Primer möglich, die Beladung einzelner Arten mit phytopathogenen Viren zu analysieren und diese Informationen in Warnmeldungen der Pflanzenschutzämter einfließen zu lassen. Basierend auf mehrjährigen Daten könnten somit nicht nur Anbauempfehlungen mit Hinblick auf z. B. Pflanzzeitpunkt und Blattlaus-/Virusresistenz in verschiedenen Kulturen gegeben werden, sondern auch kontinuierlich Prognosemodelle zum möglichen Auftreten von Blattläusen (z. B. Thackray et al., 2009; Holloway et al., 2018) überprüft und angepasst werden. Auch das vermehrte Auftreten bisher nicht als Schädling relevanter Blattlausarten mit hohem Schadpotential, z. B. D. noxia, und das Auftreten neuer (invasiver) Blattlausarten (Teulon & Scott, 2006) bzw. neuer oder bisher unbekannter phytopathogener Viren/Mikroorganismen (z. B. Sjolund et al., 2018) ist bei umfangreicher Analyse der Fänge aus Gelbschalen und Saugfallen möglich. Um das genannte Potential der Methodik zu nutzen, müssten die zwei momentan in Deutschland im Betrieb befindlichen Saugfallen in Groß-Lüsewitz und Quedlinburg durch weitere Fallen ergänzt werden. Ebenfalls könnten aus einem flächendeckenden Monitoring Hinweise über die Migration und die Verbreitung von Insektizidresistenzen für wirtschaftlich relevante Blattlausarten gewonnen werden, wie beispielhaft für die Blattlausart M. persicae anhand des Auftretens von Esterase-, MACE- und kdr-Resistenz in Saugfallenproben für Süd-Ost-England gezeigt (Foster et al., 2002). Solche Analysen, wie sie bereits seit 1989 mit Proben aus dem Saugfallennetzwerk im Vereinigten Königreich durchgeführt werden, geben Landwirten ergänzende Daten, welche die der Pflanzenschutzämter zu Befallsbonituren sinnvoll ergänzen, um einen gezielteren und möglicherweise reduzierten Einsatz chemischer Insektizide zu ermöglichen. Dies wäre hilfreich, um auf Seiten der Produzenten einen nicht-zielführenden Einsatz von Insektiziden zu vermeiden und somit Kosten zu reduzieren. Trotz der genannten Möglichkeiten, die Saugfallen bieten, stehen diesen der beträchtliche Personalaufwand für die Betreuung der Fallen (u. a. Wechsel von Probenflaschen) sowie die Auswertung der Fänge entgegen, was vielfach zu einer Reduktion der Anzahl von Saugfallen in einzelnen Ländern geführt hat, z. B. in Großbritannien von ehemals 37 Fallen in den 1970er Jahren (Bell et al., 2015) auf aktuell 16 Fallen (https://insectsurvey.com/suction-trap).

Insektizide mit doppelsträngiger (ds)RNA als Wirkstoff stellen eine neue Klasse innerhalb der Insektizide dar, die in naher Zukunft verfügbar sein werden. Diese als hoch effizient und spezifisch angesehenen Insektizide wurden bereits experimentell gegen ein breites Spektrum an Schadinsekten, wie z. B. verschiedene Blattlausarten (A. pisum – Niu et al., 2019; A. glycines – Yan et al., 2020; S. avenae – Biedenkopf et al., 2020), erprobt und hinsichtlich ihrer Wirkmechanismen charakterisiert. Die hierbei applizierte dsRNA kann sich, abhängig von der Formulierung, entweder systemisch entlang der Leitbündel in der Pflanze ausbreiten und von Blattläusen mit dem Sieb­elementsaft aus den Siebelementen aufgenommen werden (Biedenkopf et al., 2020), oder aber mit einer direkten Wirkung transdermal in die Blattläuse eindringen (Yan et al., 2020). Auch für diese momentan in der Entwicklung befindlichen dsRNA-Insektizide erscheint ein Monitoring für eine Identifizierung möglicher Resistenzen von Interesse, da unter experimentellen Bedingungen bereits ein Stamm des Mais­wurzelbohrers (Diabrotica virgifera virgifera) entdeckt wurde, der gegen den Mechanismus selbst resistent war (Khajuria et al., 2018). Auch bei der Erbsenblattlaus (A. pisum) zeigen sich Biotypen, die wenig bis gar nicht auf mit der Nahrung aufgenommene dsRNA ansprechen (Christiaens et al., 2014). Zudem erscheint es sinnvoll, mehrere spezifische Ziel­gene als auch Applikationswege (oral, transdermal) zu kombinieren, um so eine systemische sowie eine Kontaktwirkung zu erzielen und das Risiko der Selektion resistenter Biotypen im Feld zu minimieren. Einen großen Vorteil dsRNA-basierter Insektizide stellt deren leichte Anpassung auf neue Schad­insekten dar, wenn deren genetische Informationen verfügbar sind.

Zusätzlich zu den bekannten Arten werden sich auch zukünftig immer wieder Neozoen ansiedeln, die ohne das Vorkommen natürlicher Gegenspieler zu beträcht­lichen wirtschaftlichen Schäden führen können. Ein Beispiel hierfür stellt A. glycines dar, die erstmals 2000 in Nordamerika beschrieben wurde und in den Folgejahren durch Massenauftreten starke Schäden im Sojabohnen­anbau verursachte (Ragsdale et al., 2011). Ertragsein­bußen von bis zu 40 % können beobachtet werden, wenn keine Kontrolle durch Insektizide stattfindet (Ragsdale et al., 2007). Aber nicht nur die Iden­tifikation neuer Arten, sondern auch Hinweise/Richt­linien, wie die Definition der wirtschaftlichen Schadschwelle für deren Kontrolle, sind für die landwirtschaftliche Praxis von Bedeutung. Darüber hinaus ist es wichtig den ökologischen und ökonomischen Nutzen sowie die Grundlagen, die zur Fest­legung der wirtschaftlichen Schadschwelle herangezogen werden, zu kommunizieren. Befragungen, durchgeführt durch Hoidal & Koch (2021), konnten erst kürzlich am Beispiel der Verwendung der ökonomischen Schadschwelle für A. glycines an Sojabohnen zeigen, dass diese von Landwirten in Befallsgebieten in Nordamerika in vielen Fällen aufgrund des zeitlichen Aufwandes für die Bonitur (19,51 %) sowie der schwierigen Planbarkeit zeitlich abgestimmter Bekämpfungsmaßnahmen (73,58 %) keine Anwendung finden. Darüber hinaus war das Vertrauen von Landwirten in die ermittelte wirtschaftliche Schadschwelle mit 55,56 % unter dem Mittelwert aller weiteren befragten Gruppen (65,69 %). Hoidal & Koch (2021) schlussfolgern, dass eine bessere Vermittlung von Wissen über die Ermittlung und den Sinn ökonomischer Schadschwellen deren Anwendung aufgrund höherer Akzeptanz verbessern. Dies zeigt, dass auch Themen, welche bereits seit Jahrzehnten bearbeitet werden, auch in Zukunft nicht vernachlässigt werden dürfen, zumal kontinuierlich Anpassungen der ökonomischen Schadschwelle aufgrund ihrer Abhängigkeit von Marktpreisen (Erntegut, Insektizide) sinnvoll ist.

Zukünftig wird jedoch die Kontrolle von Schadinsekten im Feld begleitet sein von einem zunehmenden Verzicht chemischer Insektizide (siehe Strategie der EU – Vom Hof auf den Tisch). Aktuell stellen hier die klassischen Züchtungsmethoden noch das Mittel der Wahl für die Entwicklung toleranter/resistenter Sorten dar. Für die Identifizierung neuer Akzessionen mit Toleranz-/Resistenzgenen aus unterschiedlichen Quellen (Crop Wild Relatives, sekundärer und tertiärer Genpool), die hierfür als Grundlage dienen, ist eine verlässliche und leistungsfähige Phänotypisierung notwendig. Interessant erscheinen hier u. a. Gene wie das oben genannte VAT-Gen-Cluster aus Cucumis melo, das u. a. einen intrazellulären Nucleotide-Binding Leucine-Rich Repeat (NBS-LRR) Rezeptor kodiert (Boissot et al., 2016). Die Phänotypisierung, wie sie für die Selektion von toleranten/resistenten Genotypen notwendig und beispielsweise bei Schad­pilzen (z. B. Tivoli et al., 2006; Mitter et al., 2006) und phytopathogenen Viren seit Jahren etabliert ist (z. B. Silvar et al., 2010), erweist sich bei Schadinsekten als Nadelöhr. Während also die Fähigkeit hinsichtlich der genetischen Charakterisierung einer großen Zahl von Pflanzen­akzessionen seit Jahrzehnten zugenommen hat, sind die Fortschritte auf Seiten der Hochdurchsatzphänotypisierung gering. Vielfach liegt hierbei der Fokus auf bildgebenden Verfahren für die Analyse von Pflanzen (Das Choudhury et al., 2019). Teils lassen sich diese Methoden auch für die Selektion toleranter/resistenter pflanzlicher Genotypen nutzen, wenn es um Blattläuse geht (z. B. Messung des Chlorophyllgehaltes: Girma et al., 1998). Diese Merkmale geben jedoch nur wenig Information über den Effekt dieser pflanzlichen Eigenschaften auf Blattläuse und andere Insekten, wodurch wichtige Informationen verloren gehen (Goggin et al., 2015). Ansätze, die sich in Demonstrationsversuchen mit Arabidopsis thaliana für eine Hochdurchsatzphäno­typisieung eignen und z. B. begrenzte Aussagen auf das Nahrungsverhalten von Blattläusen erlauben, nutzen den Nachweis persistent übertragener Viren mittels DAS-ELISA (Chen et al., 2012) oder verwenden ein Aktivitätstracking mittels Videoüberwachung (Kloth et al., 2015). Ergänzt werden diese Messungen jedoch weiterhin durch aufwändige Analysen wie der Messung der Produktion von Nachkommen oder der Bestimmung von Überlebens­raten. Es gilt diese Messungen zukünftig für ein breites Spektrum wirtschaftlich relevanter Blattlausarten durch die Nutzung maschinellen Lernens und künstlicher Intelligenz weiter zu automatisieren, wie bereits beispielhaft u. a. für die Blattlausart R. padi geschehen (Lins et al., 2020).

Das Ziel der Pflanzenzüchtung ist es, die kompatible Insekt-Pflanze-Interaktion hin zu einer Inkompatibilität zu verändern. Die Genomeditierung (GE) stellt hierbei einen Ansatz dar, mit dem dieses Ziel deutlich schneller als bisher erreicht werden kann, wobei Resistenzen direkt in Elitelinien erzeugt werden können. Hierzu bedarf es Informationen über die molekulare Interaktion von Blattlaus und Pflanze auf deren Basis Zielgene identifiziert werden können. Für verschiedene Blattlausarten konnten in den letzten Jahren eine Reihe an Effektoren identifiziert werden. Diese werden zusammen mit dem Speichel der Tiere in die Wirtspflanze abgegeben und unterdrücken in vielen Fällen Abwehrreaktionen innerhalb der Wirtspflanzen (Rodriguez & Bos, 2013). Inter­aktionspartner der Effektoren auf Pflanzenseite stellen interessante Ziele für eine Editierung dar. Wenn der Verlust eines pflanzlichen Interaktionspartners für einen Effektor keinen negativen Einfluss auf die Leistungsfähigkeit der Pflanze hat, reicht ein GE-vermitteltes Ausschalten des Gens bereits aus, um eine Inkompatibilität herzustellen. In komplexeren Fällen muss die Sequenz des Inter­aktionspartners so verändert werden, dass ein Effektor nicht mehr erfolgreich binden kann, der Interaktionspartner jedoch seine physiologische Funktion beibehält (Schenke & Cai, 2020). Darüber hinaus entstehen keine weiteren Änderungen in der Pflanze, was u. a. komplexe und langwierige Rückkreuzungen, wie sie teils bei herkömmlicher Pflanzenzüchtung notwendig sind, unnötig macht. Beispiele für Effektor-Interaktionspartner liegen für M. persicae und Kartoffel (Rodriguez et al., 2017) und A. gossypii und Tomate (Chaudhary et al., 2018) vor. Es zeigt sich, dass Effektoren hierbei spezifisch für die jeweilige Blattlausart und Wirtspflanze sein können (Rodriguez et al., 2017; Boulain et al., 2019). In vielen Fällen sind die Interaktionspartner auf Seiten der Kulturpflanze jedoch unbekannt und es bedarf intensiver Forschung, um diese Informationen zu gewinnen und zukünftig nutzbar zu machen, insbesondere auch, da Ergebnisse zwischen den jeweiligen Blattlaus-Pflanze-Kombinationen nicht übertragbar sind. Zudem rufen nicht alle vermeintlich guten Ziele für das Erreichen einer Inkompatibilität auch eine solche nach deren Ausschalten hervor, wie sich am Beispiel des Ausbleibens einer Reaktion auf Seiten der Blattlausart R. padi nach Ausschalten von β-1,3-Glucanase-Genen in Gerste zeigte (Kim et al., 2020). Trotz des Potentials der Methodik ist momentan unklar, wie sich genom-editierte Kulturpflanzen bei momentaner Einstufung als gentechnisch veränderte Organismen in Zukunft in Europa etablieren.